Размер шрифта
Цветовая схема
Изображения
Форма
Межсимвольный интервал
Межстрочный интервал
стандартные настройки
обычная версия сайта
закрыть
  • Вход
  • Регистрация
  • Помощь
Выбрать БД
Простой поискРасширенный поискИстория поисков
Главная / Результаты поиска

НАНОСТРУКТУРА МЕМБРАН ЭРИТРОЦИТОВ ПРИ ИНТОКСИКАЦИИ КРОВИ. ИССЛЕДОВАНИЕ С ПОМОЩЬЮ АТОМНОЙ СИЛОВОЙ МИКРОСКОПИИ

Сергунова В.А.[1], Черняев А.П.[2], Козлов А.П.[3], Близнюк У.А.[2], Борщеговская П.Ю.[2], Козлова Е.К.[4], Черныш А.М.[5]
Альманах клинической медицины
Т. 44, № 2, С. 234-241
Опубликовано: 15 2016
Тип ресурса: Статья

DOI:10.18786/2072-0505-2016-44-2-234-241

Аннотация:
Актуальность. Действие токсинов на нано- структуру мембран клеток крови  – одна из ключевых проблем биофизики и  медицины. Главными показателями качества крови признаны морфология и структура мембран эритроцитов. В этой связи актуальной задачей представляется анализ дефектов мембран при действии токсинов. Цель – выявить характерные особенности наноструктуры мембран и  установить закономерности ее изменения, возникающие при интоксикации гемином и  при длительном хранении эритроцитарной взвеси. Материал и методы. Исследования проводили in vitro на цельной крови человека, в которую добавляли гемин, и  на эритроцитарной взвеси с  гемокон- сервантом CPD, которую хранили при 4 °С в течение 30  суток. Наноструктуру мембран эритроцитов изучали с помощью атомной силовой микроскопии. Результаты. Характерные размеры пространственных периодов между «зернами» составили 120–200 нм. Количество «зерен» в области топологического дефекта варьировало от 4–5 до нескольких десятков. Такие домены возникали практически на всех клетках эритроцитарной взвеси, а  также при воздействии гемина на кровь. При повышении интоксикации гемином и  при увеличении срока хранения возрастало количество эхиноцитов, которые впоследствии трансформировались в  сфероэхиноциты. При воздействии гемином и  при хранении эритроцитарной взвеси на 9–12-е сутки наблюдалось специфическое изменение наноструктуры мембран красных клеток крови. Образовывались структурные кластеры  – домены, в которых проявлялась зернистая структура. Заключение. Экспериментально установлено, что гемин и окислительные процессы в крови оказывают специфическое воздействие на наноструктуру мембран эритроцитов, образуя домены на поверхности. Характерный размер зернистых структур в  доменах составляет 100–200  нм, что совпадает с  характерным размером спектринового матрикса. Данные результаты можно применять в  фундаментальной и практической медицине, при проведении гемотрансфузии, при анализе действия токсина на организм человека. Биофизические механизмы образования доменов могут лечь в  основу изучения взаимодействия токсинов с  мембранами.
Background: The effects of toxins on nanostructure of blood cells are one of the key problems of biophysics and medicine. Erythrocyte morphology and membrane structure are recognized as the main parameters of blood quality. Therefore, analysis of membrane defects under toxin effects seems an urgent issue. Aim: To identify characteristic features and patterns of changes in membrane nanostructure under hemin intoxication and during extended storage of erythrocyte suspension. Materials and methods: The study was done in vitro in human whole blood with addition of hemin, аnd in erythrocyte suspension with a CPD blood preservative stored at 4 °С for 30 days. The nanostructure of erythrocyte membrane was assessed by atomic force microscopy. Results: Characteristic size of space periods between “granules” was from 120 to 200 nm. “Granule” numbers within a topological defect varied from 4 to 5 and to several dozens. Such domains arose virtually on all cells in erythrocyte suspension, as well as after hemin addition to the blood. An increase in hemin intoxication and an increase in a storage time were associated by increases in echinocyte numbers that subsequently transformed into spherical echinocytes. Both under hemin and during the storage of erythrocyte suspension for 9 to 12 days, a specific abnormality in nanostructure of erythrocyte membrane was observed: structural clusters, i.e., domains with granular structure, were formed. Conclusion: The experiments showed that both hemin and oxidative processes in the blood can specifically affect the nanostructure of erythrocyte membranes with formation of domains on their surface. The specific size of granular structures in the domains is from 100 to 200 nm that coincides with a  specific size of spectrin matrix. These results can be used in basic and applied medicine, in blood transfusion, for the analysis of a toxin effects in the human body. The biophysical mechanisms of domain formation can become a  basis for the study on a toxin – membrane cross-talk.
[1]Московский клинический научно-практический центр им. А. С. Логинова; 107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация
[2]«Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»; 119991, г. Москва, Ленинские горы, 1, Российская Федерация
[3]Первый МГМУ им. И.М. Сеченова МЗ РФ; 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, 8/2, Российская Федерация
[4]Московский клинический научно-практический центр им. А. С. Логинова; 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, 8/2, Российская Федерация; 107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»; 119991, г. Москва, Ленинские горы, 1, Российская Федерация ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
[5]Московский клинический научно-практический центр им. А. С. Логинова; 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, 8/2, Российская Федерация; 107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
Язык текста: Русский
ISSN: 2072-0505
Сергунова В.А. Московский клинический научно-практический центр им. А. С. Логинова; 107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация
Черняев А.П. «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»; 119991, г. Москва, Ленинские горы, 1, Российская Федерация
Козлов А.П. Первый МГМУ им. И.М. Сеченова МЗ РФ; 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, 8/2, Российская Федерация
Близнюк У.А. «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»; 119991, г. Москва, Ленинские горы, 1, Российская Федерация
Борщеговская П.Ю. «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»; 119991, г. Москва, Ленинские горы, 1, Российская Федерация
Козлова Е.К. Московский клинический научно-практический центр им. А. С. Логинова; 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, 8/2, Российская Федерация; 107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»; 119991, г. Москва, Ленинские горы, 1, Российская Федерация ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
Черныш А.М. Московский клинический научно-практический центр им. А. С. Логинова; 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, 8/2, Российская Федерация; 107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
Московский клинический научно-практический центр им. А. С. Логинова
V. A. Negovsky Scientific Research Institute of General Reanimatology
107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация
25/2 Petrovka ul., Moscow, 107031, Russian Federation
«Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»
Lomonosov Moscow State University
119991, г. Москва, Ленинские горы, 1, Российская Федерация
1 Leninskie Gory, Moscow, 119991, Russian Federation
Первый МГМУ им. И.М. Сеченова МЗ РФ
I.M. Sechenov First Moscow State Medical University
119991, г. Москва, ул. Трубецкая, 8/2, Российская Федерация
8/2 Trubetskaya ul., Moscow, 119991, Russian Federation
107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»
25/2 Petrovka ul., Moscow, 107031, Russian Federation Lomonosov Moscow State University
119991, г. Москва, Ленинские горы, 1, Российская Федерация ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
1 Leninskie gory, Moscow, 119991, Russian Federation I.M. Sechenov First Moscow State Medical University
107031, г. Москва, ул. Петровка, 25/2, Российская Федерация ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
25/2 Petrovka ul., Moscow, 107031, Russian Federation I.M. Sechenov First Moscow State Medical University
Sergunova V.A. V. A. Negovsky Scientific Research Institute of General Reanimatology; 25/2 Petrovka ul., Moscow, 107031, Russian Federation
Chernyaev A.P. Lomonosov Moscow State University; 1 Leninskie Gory, Moscow, 119991, Russian Federation
Kozlov A.P. I.M. Sechenov First Moscow State Medical University; 8/2 Trubetskaya ul., Moscow, 119991, Russian Federation
Bliznyuk U.A. Lomonosov Moscow State University; 1 Leninskie Gory, Moscow, 119991, Russian Federation
Borshchegovskaya P.Y. P. Yu. Lomonosov Moscow State University; 1 Leninskie Gory, Moscow, 119991, Russian Federation
Kozlova E.K. V. A. Negovsky Scientific Research Institute of General Reanimatology; 8/2 Trubetskaya ul., Moscow, 119991, Russian Federation; 25/2 Petrovka ul., Moscow, 107031, Russian Federation Lomonosov Moscow State University; 1 Leninskie gory, Moscow, 119991, Russian Federation I.M. Sechenov First Moscow State Medical University
Chernysh A.M. V. A. Negovsky Scientific Research Institute of General Reanimatology; 8/2 Trubetskaya ul., Moscow, 119991, Russian Federation; 25/2 Petrovka ul., Moscow, 107031, Russian Federation I.M. Sechenov First Moscow State Medical University
THE NANOSTRUCTURE OF ERYTHROCYTE MEMBRANES UNDER BLOOD INTOXICATION: AN ATOMIC FORCE MICROSCOPY STUDY eng
НАНОСТРУКТУРА МЕМБРАН ЭРИТРОЦИТОВ ПРИ ИНТОКСИКАЦИИ КРОВИ. ИССЛЕДОВАНИЕ С ПОМОЩЬЮ АТОМНОЙ СИЛОВОЙ МИКРОСКОПИИ
Текст визуальный электронный
Альманах клинической медицины
Moscow Regional Research and Clinical Institute (MONIKI)
Т. 44, № 2 С. 234-241
2016
мембраны эритроцитов
erythrocyte membrane
наноструктура
nanostructure
домены с зернистой структурой
granular structure domain
атомная силовая микроскопия
atomic force microscopy
ГЕМИН
HEMIN
эритроцитарная взвесь
erythrocyte suspension
Статья
Актуальность. Действие токсинов на нано- структуру мембран клеток крови  – одна из ключевых проблем биофизики и  медицины. Главными показателями качества крови признаны морфология и структура мембран эритроцитов. В этой связи актуальной задачей представляется анализ дефектов мембран при действии токсинов. Цель – выявить характерные особенности наноструктуры мембран и  установить закономерности ее изменения, возникающие при интоксикации гемином и  при длительном хранении эритроцитарной взвеси. Материал и методы. Исследования проводили in vitro на цельной крови человека, в которую добавляли гемин, и  на эритроцитарной взвеси с  гемокон- сервантом CPD, которую хранили при 4 °С в течение 30  суток. Наноструктуру мембран эритроцитов изучали с помощью атомной силовой микроскопии. Результаты. Характерные размеры пространственных периодов между «зернами» составили 120–200 нм. Количество «зерен» в области топологического дефекта варьировало от 4–5 до нескольких десятков. Такие домены возникали практически на всех клетках эритроцитарной взвеси, а  также при воздействии гемина на кровь. При повышении интоксикации гемином и  при увеличении срока хранения возрастало количество эхиноцитов, которые впоследствии трансформировались в  сфероэхиноциты. При воздействии гемином и  при хранении эритроцитарной взвеси на 9–12-е сутки наблюдалось специфическое изменение наноструктуры мембран красных клеток крови. Образовывались структурные кластеры  – домены, в которых проявлялась зернистая структура. Заключение. Экспериментально установлено, что гемин и окислительные процессы в крови оказывают специфическое воздействие на наноструктуру мембран эритроцитов, образуя домены на поверхности. Характерный размер зернистых структур в  доменах составляет 100–200  нм, что совпадает с  характерным размером спектринового матрикса. Данные результаты можно применять в  фундаментальной и практической медицине, при проведении гемотрансфузии, при анализе действия токсина на организм человека. Биофизические механизмы образования доменов могут лечь в  основу изучения взаимодействия токсинов с  мембранами.
Background: The effects of toxins on nanostructure of blood cells are one of the key problems of biophysics and medicine. Erythrocyte morphology and membrane structure are recognized as the main parameters of blood quality. Therefore, analysis of membrane defects under toxin effects seems an urgent issue. Aim: To identify characteristic features and patterns of changes in membrane nanostructure under hemin intoxication and during extended storage of erythrocyte suspension. Materials and methods: The study was done in vitro in human whole blood with addition of hemin, аnd in erythrocyte suspension with a CPD blood preservative stored at 4 °С for 30 days. The nanostructure of erythrocyte membrane was assessed by atomic force microscopy. Results: Characteristic size of space periods between “granules” was from 120 to 200 nm. “Granule” numbers within a topological defect varied from 4 to 5 and to several dozens. Such domains arose virtually on all cells in erythrocyte suspension, as well as after hemin addition to the blood. An increase in hemin intoxication and an increase in a storage time were associated by increases in echinocyte numbers that subsequently transformed into spherical echinocytes. Both under hemin and during the storage of erythrocyte suspension for 9 to 12 days, a specific abnormality in nanostructure of erythrocyte membrane was observed: structural clusters, i.e., domains with granular structure, were formed. Conclusion: The experiments showed that both hemin and oxidative processes in the blood can specifically affect the nanostructure of erythrocyte membranes with formation of domains on their surface. The specific size of granular structures in the domains is from 100 to 200 nm that coincides with a  specific size of spectrin matrix. These results can be used in basic and applied medicine, in blood transfusion, for the analysis of a toxin effects in the human body. The biophysical mechanisms of domain formation can become a  basis for the study on a toxin – membrane cross-talk.